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肿瘤坏死因子-α(TNF-α)生物学活性测定
[ 文章来源: | 文章作者: | 发布时间:2006-11-01|  字体: [ ]  
肿瘤坏死因子-α(TNF-α)是一种主要由单核-吞噬细胞产生的单核因子,不仅具有选择性地杀伤某些肿瘤细胞,而且有多种免疫调节作用。其检测方法主要包括生物学活性测定和免疫学检测方法。其中细胞毒生物学检测方法敏感性较高,最为常用;免疫学检测方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)和放射免疫测定法。
  (一) 原理:
  TNF-α受体广泛地分布于多种肿瘤细胞和血细胞,根据TNF-α与相应靶细胞结合后引起不同的生物学效应,建立了多种检测TNF-α生物学活性方法。某些肿瘤细胞膜表面的TNF-α受体与TNF-α结合后,可导致这些肿瘤细胞的死亡,可通过检测对肿瘤细胞的杀伤能力,来反映TNF-α的生物学活性。若这种肿瘤细胞先用3H-TdR标记,则被杀伤后3H-TdR释放至细胞外,牽I通过测定肿瘤细胞释放3H-TdR的量来反映TNF-α的杀伤活性。
  (二) 操作步骤:
       0.25%胰蛋白酶消化处于对数生长期的L929细胞
                  ↓
       用RPMI1640洗涤细胞后,调整细胞浓度至2×106/ml
                  ↓
           加入3H-TdR,20μci/ml
                  ↓
         置37℃,5%CO?培养箱中2~3h,摇动1次/30min
                  ↓
         用RPMI1640洗涤2次,800rpm×5min/次
                  ↓
         调整细胞浓度至2~3×105/ml后,加入96孔
         培养板中,100μl/孔
                  ↓
         加入不同稀释度的待测样本(设三个重复孔)
                  ↓
         加入放线菌素D,使放线菌素D最终浓度至1μg/ml
         用时设放线菌素、完全培基阴性对照和rTNF-α标准
                品阳性对照
                  ↓37℃, 5%CO?培养中24h
            加入3%胰蛋白酶和0.25%DNA酶各10μl/孔
                  ↓37℃,30min
            用DYQ-Ⅱ型多头细胞收集器收集样品于
            "9999"型玻璃纤维滤纸上
                  ↓
              烤干后,进行β计数

 结果判定:
  1. TNF-α作用24h后,在倒置显微镜下判定50%L929细胞杀伤的稀释度即为1个TNF-α活性单位。
  2. 根据测得的cpm值按下列公式计数活性单位:
    TNF-α活性单位(U/ml)
        放线菌素D对照组cpm-实验组cpm
       =──────────────×标准品活性单位×待测样品稀释倍数
        放线菌素D对照组cpm-标准品cpm
  (三) 试剂和器材:
  1. 鼠成纤维细胞(L929)
  2. rTNF-α和待测样品
  3. 放线菌素、DNA酶、胰蛋白酶
  4. 10%FCS RPMI1640,RPMI1640
  5. 3H-TdR,PPO,POPOP、二甲苯,玻璃纤维滤纸
  6. 96孔培养板、无菌吸管、滴管、试管、加样器和加样器头
  7. CO?培养箱、倒置显微镜、超净台等
  (四) 注意事项:
  1. 用于标记3H-TdR的L929细胞要处于对数生长期,否则3H-TdR掺入率低,影响实验结果。
  2. 标记后的L929细胞应充分洗涤,以洗掉游离的3H-TdR,牱q则会影响完全培基对照组cpm值。
  3. 胰蛋白酶和DNA酶浓度和消化时间要严格控制,犆?批酶均要摸索最适浓度和时间。否则,消化时间过长或过短者会影响实验结果。
  4. 为了增强检测系统的敏感性,在测定系统中加入放线菌素D,但浓度不宜过大,一般最终浓度为0.5~1μg/ml。
  5. 在测定PHA等丝裂原诱导的PBMC培养上清时,要注意排除TNF-β(淋巴毒素)的影响。因为TNF-β细胞毒生物学作用等很多生物学效应均与TNF-α相似。


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